Bieżący numer
O czasopiśmie
Rada Naukowa
Kolegium Redakcyjne
Polityka prawno-archiwizacyjna
Kodeks etyki publikacyjnej
Wydawca
Informacja o przetwarzaniu danych osobowych w ramach plików cookies oraz subskrypcji newslettera
Archiwum
Dla autorów
Dla recenzentów
Kontakt
Recenzenci
Recenzenci rocznika 2024
Recenzenci rocznika 2023
Recenzenci rocznika 2022
Recenzenci rocznika 2021
Recenzenci rocznika 2020
Recenzenci rocznika 2019
Recenzenci rocznika 2018
Recenzenci rocznika 2017
Recenzenci rocznika 2016
Recenzenci rocznika 2015
Recenzenci rocznika 2014
Recenzenci rocznika 2013
Recenzenci rocznika 2012
Polecamy
Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach
Sklep Wydawnictw SUM
Biblioteka Główna SUM
Polityka prywatności
Deklaracja dostępności
Recenzenci
Recenzenci rocznika 2024
Recenzenci rocznika 2023
Recenzenci rocznika 2022
Recenzenci rocznika 2021
Recenzenci rocznika 2020
Recenzenci rocznika 2019
Recenzenci rocznika 2018
Recenzenci rocznika 2017
Recenzenci rocznika 2016
Recenzenci rocznika 2015
Recenzenci rocznika 2014
Recenzenci rocznika 2013
Recenzenci rocznika 2012
Ognisko epidemiczne Clostridioides difficile w śląskim szpitalu powiatowym
1
Department of Medical Microbiology, Faculty of Medical Sciences in Katowice, Medical University of Silesia, Katowice, Poland / Katedra i Zakład Mikrobiologii Lekarskiej, Wydział Nauk Medycznych w Katowicach, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach
2
Student Research Group, Department of Medical Microbiology, Faculty of Medical Sciences in Katowice, Medical University of Silesia, Katowice, Poland / Studenckie Koło Naukowe przy Katedrze i Zakładzie Mikrobiologii Lekarskiej, Wydział Nauk Medycznych w Katowicach, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach
3
Department of Microbiology, KORLAB Medical Laboratory, Ruda Śląska, Poland / Pracownia Mikrobiologii, KORLAB Laboratoria Medyczne, Ruda Śląska
Autor do korespondencji
Klaudia T. Szarek
Katedra i Zakład Mikrobiologii Lekarskiej, Wydział Nauk Medycznych w Katowicach, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, ul. Medyków 18, 40-752 Katowice
Katedra i Zakład Mikrobiologii Lekarskiej, Wydział Nauk Medycznych w Katowicach, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, ul. Medyków 18, 40-752 Katowice
Ann. Acad. Med. Siles. 2023;77:75-81
SŁOWA KLUCZOWE
DZIEDZINY
STRESZCZENIE
Wstęp:
W celu oceny ogniska zakażenia Clostridioides difficile (Clostridioides difficile infection – CDI) w okresie od grudnia 2018 r. do lutego 2019 r. na oddziale chorób wewnętrznych szpitala powiatowego na Śląsku objęto badaniem materiały kliniczne od 5 pacjentów (6 stolców).
Materiał i metody:
Zidentyfikowano izolaty C. difficile, geny kodujące dehydrogenazę glutaminianową (GDH) – gluD, toksyny A/B – tcdA/tcdB oraz geny cdtA/cdtB kodujące toksynę binarną, ermB wykryto za pomocą mPCR, a antybiotykooporność za pomocą E-testów.
Wyniki:
Wśród pacjentów dominowały kobiety (4/5). Wszystkie szczepy C. difficile (6) należały do hiperepidemicznego rybotypu 027, we wszystkich szczepach wykazano obecność badanych genów oraz wykryto oporność na: moksyfloksacynę, erytromycynę, klindamycynę, ryfampicynę, imipenem i chloramfenikol.
Wnioski:
Uzyskane wyniki świadczą o szerzeniu się na oddziale hiperepidemicznego klonu C. difficile o rybotypie 027.
W celu oceny ogniska zakażenia Clostridioides difficile (Clostridioides difficile infection – CDI) w okresie od grudnia 2018 r. do lutego 2019 r. na oddziale chorób wewnętrznych szpitala powiatowego na Śląsku objęto badaniem materiały kliniczne od 5 pacjentów (6 stolców).
Materiał i metody:
Zidentyfikowano izolaty C. difficile, geny kodujące dehydrogenazę glutaminianową (GDH) – gluD, toksyny A/B – tcdA/tcdB oraz geny cdtA/cdtB kodujące toksynę binarną, ermB wykryto za pomocą mPCR, a antybiotykooporność za pomocą E-testów.
Wyniki:
Wśród pacjentów dominowały kobiety (4/5). Wszystkie szczepy C. difficile (6) należały do hiperepidemicznego rybotypu 027, we wszystkich szczepach wykazano obecność badanych genów oraz wykryto oporność na: moksyfloksacynę, erytromycynę, klindamycynę, ryfampicynę, imipenem i chloramfenikol.
Wnioski:
Uzyskane wyniki świadczą o szerzeniu się na oddziale hiperepidemicznego klonu C. difficile o rybotypie 027.
REFERENCJE (21)
1.
Stan Sanitarny Kraju w 2020 roku [pdf]. Główny Inspektorat Sanitarny. Warszawa, sierpień 2021 r. [online] https://www.gov.pl/web/gis/sta... [accessed on 20 June 2021].
2.
Marra A.R., Perencevich E.N., Nelson R.E., Samore M., Khader K., Chiang H.Y. et al. Incidence and outcomes associated with Clostridium difficile infections: a systematic review and meta-analysis. JAMA Netw. Open 2020; 3(1): e1917597, doi: 10.1001/jamanetworkopen.2019.17597.
3.
Lewandowski K., Rosołowski M., Kaniewska M., Kucha P., Meler A., Wierzba W., Rydzewska G. Clostridioides difficile infection in coronavirus disease 2019 (COVID-19): an underestimated problem? Pol. Arch. Intern Med. 2021; 131(2): 121–127, doi: 10.20452/pamw.15715.
4.
Czepiel J., Dróżdż M., Pituch H., Kuijper E.J., Perucki W., Mielimonka A. et al. Clostridium difficile infection: review. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2019; 38(7): 1211–1221, doi: 10.1007/s10096-019-03539-6.
5.
Aptekorz M., Szczegielniak A., Wiechuła B., Harmanus C., Kuijper E., Martirosian G. Occurrence of Clostridium difficile ribotype 027 in hospitals of Silesia, Poland. Anaerobe 2017; 45: 106–113, doi: 10.1016/j.anaerobe.2017.02.002.
6.
Kabała M., Gofron Z., Aptekorz M., Sacha K., Harmanus C., Kuijper E. et al. Clostridioides difficile ribotype 027 (RT027) outbreak investigation due to the emergence of rifampicin resistance using multilocus variable-number tandem repeat analysis (MLVA). Infect. Drug Resist. 2021; 14: 3247–3254, doi: 10.2147/IDR.S324745.
7.
Davies K.A., Ashwin H., Longshaw C.M., Burns D.A., Davis G.L., Wilcox M.H. et al. Diversity of Clostridium difficile PCR ribotypes in Europe: results from the European, multicentre, prospective, biannual, point-prevalence study of Clostridium difficile infection in hospitalised patients with diarrhoea (EUCLID), 2012 and 2013. Euro. Surveill. 2016; 21(29), doi: 10.2807/1560-7917.ES.2016.21.29.30294.
8.
Collins D.A., Riley T.V. Clostridium difficile Guidelines. Clin. Infect. Dis. 2018; 67(10): 1639, doi: 10.1093/cid/ciy249.
9.
Lachowicz D., Pituch H., Wultańska D., Kuijper E., Obuch-Woszczatyński P. Surveillance of antimicrobial susceptibilities reveals high proportions of multidrug resistance in toxigenic Clostridium difficile strains in different areas of Poland. Anaerobe 2020; 62: 102167, doi: 10.1016/j.anaerobe.2020.102167.
10.
van Prehn J., Reigadas E., Vogelzang E.H., Bouza E., Hristea A., Guery B. et al. European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases: 2021 update on the treatment guidance document for Clostridioides difficile infection in adults. Clin. Microbiol. Infect. 2021; 27(Suppl 2): S1–S21, doi: 10.1016/j.cmi.2021.09.038.
11.
Johnson S., Lavergne V., Skinner A.M., Gonzales-Luna A.J., Garey K.W., Kelly C.P. et al. Clinical Practice Guideline by the Infectious Diseases Society of America (IDSA) and Society for Healthcare Epidemiology of America (SHEA): 2021 Focused Update Guidelines on Management of Clostridioides difficile Infection in Adults. Clin. Infect. Dis. 2021; 73(5): e1029–e1044, doi: 10.1093/cid/ciab549.
12.
Clancy C.J., Buehrle D., Vu M., Wagener M.W., Nguyen M.H. Impact of Revised Infectious Diseases Society of America and Society for Healthcare Epidemiology of America Clinical Practice Guidelines on the Treatment of Clostridium difficile Infections in the United States. Clin. Infect. Dis. 2021; 72(11): 1944–1949, doi: 10.1093/cid/ciaa484.
13.
Lee H.S., Plechot K., Gohil S., Le J. Clostridium difficile: diagnosis and the consequence of over diagnosis. Infect. Dis. Ther. 2021; 10(2): 687–697, doi: 10.1007/s40121-021-00417-7.
14.
Stubbs S., Rupnik M., Gibert M., Brazier J., Duerden B., Popoff M. Production of actin-specific ADP-ribosyltransferase (binary toxin) by strains of Clostridium difficile. FEMS Microbiol. Lett. 2000; 186(2): 307–312, doi: 10.1111/j.1574-6968.2000.tb09122.x.
15.
Fawley W.N., Knetsch C.W., MacCannell D.R., Harmanus C., Du T., Mulvey M.R. et al. Development and validation of an internationally-standardized, high-resolution capillary gel-based electrophoresis PCR-ribotyping protocol for Clostridium difficile. PLoS One 2015; 10(2): e0118150, doi: 10.1371/journal.pone.0118150.
16.
Clinical breakpoints – bacteria (v10.0) – 2020. EUCAST [online] https://www.eucast.org/clinica... [accessed on 12 December 2021].
17.
Allegretti J.R., Marcus J., Storm M., Sitko J., Kennedy K., Gerber G.K. et al. Clinical predictors of recurrence after primary Clostridioides difficile infection: a prospective cohort study. Dig. Dis. Sci. 2020; 65(6): 1761–1766, doi: 10.1007/s10620-019-05900-3.
18.
Dharbhamulla N., Abdelhady A., Domadia M., Patel S., Gaughan J., Roy S. Risk factors associated with recurrent Clostridium difficile infection. J. Clin. Med. Res. 2019; 11(1): 1–6, doi: 10.14740/jocmr3531w.
19.
Cioni G., Viale P., Frasson S., Cipollini F., Menichetti F., Petrosillo N. et al. Epidemiology and outcome of Clostridium difficile infections in patients hospitalized in Internal Medicine: findings from the nationwide FADOI-PRACTICE study. BMC Infect. Dis. 2016; 16(1): 656, doi: 10.1186/s12879-016-1961-9.
20.
Vernon J.J., Wilcox M.H., Freeman J. Antimicrobial resistance progression in the United Kingdom: A temporal comparison of Clostridioides difficile antimicrobial susceptibilities. Anaerobe 2021; 70: 102385, doi: 10.1016/j.anaerobe.2021.102385.
21.
Pituch H., Obuch-Woszczatyński P., Lachowicz D., Kuthan R., Dzierżanowska-Fangrat K., Mikucka A. et al. Prevalence of Clostridium difficile infection in hospitalized patients with diarrhoea: Results of a Polish multicenter, prospective, biannual point-prevalence study. Adv. Med. Sci. 2018; 63(2): 290–295, doi: 10.1016/j.advms.2018.03.003.
CYTOWANIA (2):
1.
Clostridioides difficile Infection Recurrence in a 68-Year-Old Patient of the Internal Medicine Ward
Klaudia Szarek, Martyna Gąsiorek, Monika Kabała, Tomasz J. Wąsik
Jundishapur Journal of Microbiology
Klaudia Szarek, Martyna Gąsiorek, Monika Kabała, Tomasz J. Wąsik
Jundishapur Journal of Microbiology
2.
Dominance of toxigenic Clostridioides difficile strains and the appearance of the emerging PCR ribotype 955 in hospitals in Silesia, Poland
Klaudia Szarek, Natalia Frankowska, Monika Kabała, Wiep Klaas Smits, Dorota Wultańska, Piotr Lalowski, Hanna Pituch, Adam Iwanicki, Krzysztof Hinc, Céline Harmanus, Ingrid M. J. G. Sanders, Robert Wojtyczka, Tomasz J. Wąsik
Frontiers in Microbiology
Klaudia Szarek, Natalia Frankowska, Monika Kabała, Wiep Klaas Smits, Dorota Wultańska, Piotr Lalowski, Hanna Pituch, Adam Iwanicki, Krzysztof Hinc, Céline Harmanus, Ingrid M. J. G. Sanders, Robert Wojtyczka, Tomasz J. Wąsik
Frontiers in Microbiology
Udostępnij
| eISSN: | 1734-025X |
Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, jako Operator Serwisu annales.sum.edu.pl, przetwarza dane osobowe zbierane podczas odwiedzania Serwisu. Realizacja funkcji pozyskiwania informacji o Użytkownikach i ich zachowaniu odbywa się poprzez dobrowolnie wprowadzone w formularzach informacje, zapisywanie w urządzeniach końcowych plików cookies (tzw. ciasteczka), a także poprzez gromadzenie logów serwera www, będącego w posiadaniu Operatora Serwisu. Dane, w tym pliki cookies, wykorzystywane są w celu realizacji usług zgodnie z Polityką prywatności.
Możesz wyrazić zgodę na przetwarzanie danych w tych celach, odmówić zgody lub uzyskać dostęp do bardziej szczegółowych informacji.
Możesz wyrazić zgodę na przetwarzanie danych w tych celach, odmówić zgody lub uzyskać dostęp do bardziej szczegółowych informacji.
