Wpływ lasera Er:YAG na proliferację ludzkich fibroblastów, śmierć komórkową oraz sygnalizację uszkodzeń DNA z udziałem γH2AX
Więcej
Ukryj
1
PhD Candidate, Department of Periodontal Diseases and Oral Mucosa Diseases, Faculty of Medical Sciences in Zabrze, Medical University of Silesia, Katowice, Poland
2
Department of Dental Surgery, Wroclaw Medical University, Poland
3
Department of Microbiology, Faculty of Pharmaceutical Sciences in Sosnowiec, Medical University of Silesia, Katowice, Poland
4
Department of Periodontal Diseases and Oral Mucosa Diseases, Faculty of Medical Sciences in Zabrze, Medical University of Silesia, Katowice, Poland
Autor do korespondencji
Jakub Fiegler-Rudol
Katedra i Zakład Chorób Przyzębia i Błony Śluzowej Jamy Ustnej, Wydział Nauk Medycznych w Zabrzu ŚUM, pl. Traugutta 2, 41-800 Zabrze
Ann. Acad. Med. Siles. 2026;80:274-290
SŁOWA KLUCZOWE
DZIEDZINY
STRESZCZENIE
Wstęp:
Odpowiedź biologiczna fibroblastów na naświetlanie laserem Er:YAG jest zależna od dawki, jednak próg między ekspozycją biologicznie tolerowaną a cytotoksyczną pozostaje niedostatecznie określony. Celem badania jest ocena zależnych od dawki efektów naświetlania laserem Er:YAG (80–180 mJ) na proliferację, apoptozę/nekrozę oraz sygnalizację uszkodzeń DNA związaną z γH2AX w ludzkich fibroblastach w warunkach in vitro.
Materiał i metody:
Ludzkie fibroblasty napletka (human foreskin fibroblasts – HFF-1) poddano naświetlaniu laserem Er:YAG (2940 nm; 10 Hz; 300 µs; 3 min) przy energiach 80, 130 lub 180 mJ i porównano z grupą kontrolną, poddaną procedurze pozorowanej. Proliferację oceniano za pomocą 24-godzinnego mikroskopowego obrazowania poklatkowego z fluorescencją. Apoptozę i nekrozę oznaczano barwieniem Aneksyną V/EthD-III, a uszkodzenia DNA za pomocą immunofluorescencyjnego wykrywania γH2AX. Przeprowadzono trzy niezależne repliki biologiczne; zastosowano analizę ANOVA z testami post hoc (p < 0,05).
Wyniki:
Naświetlanie indukowało zależne od dawki zahamowanie proliferacji, istotne w grupie 180 mJ od 10. godziny, a we wszystkich naświetlanych grupach od 14. godziny (p ≤ 0,03), nasilające się wraz ze wzrostem energii (p < 0,001). Apoptoza i nekroza nie uległy istotnym zmianom przy 80 i 130 mJ (p > 0,05), natomiast 180 mJ spowodowało wyraźny wzrost obu parametrów (p < 0,001). Ekspresja γH2AX pozostawała niezmieniona przy niższych energiach, lecz była istotnie podwyższona przy 180 mJ (p < 0,001).
Wnioski:
Wyniki wskazują na biologiczny punkt przejścia między 130 a 180 mJ, charakteryzujący się zatrzymaniem proliferacji, aktywacją szlaków śmierci komórkowej oraz nasiloną sygnalizacją uszkodzeń DNA związaną z γH2AX. Uzyskane dane mają charakter wskazujący, a nie definitywny, i wymagają walidacji w udoskonalonych modelach eksperymentalnych przed zastosowaniem klinicznym.
FINANSOWANIE
Na badania nie otrzymano żadnego zewnętrznego dofinansowania.
KONFLIKT INTERESÓW
Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.
Oświadczenie o wykorzystaniu narzędzi AI: Do korekty językowej wykorzystano narzędzie Grammarly AI.
REFERENCJE (33)
1.
Lin T, Yu CC, Liu CM, Hsieh PL, Liao YW, Yu CH, et al. Er:YAG laser promotes proliferation and wound healing capacity of human periodontal ligament fibroblasts through galectin-7 induction. J Formos Med Assoc. 2021;120(1 Pt 2):388–394. doi: 10.1016/j.jfma.2020.06.005.
2.
Pourzarandian A, Watanabe H, Ruwanpura SM, Aoki A, Noguchi K, Ishikawa I. Er:YAG laser irradiation increases prostaglandin E production via the induction of cyclooxygenase-2 mRNA in human gingival fibroblasts. J Periodontal Res. 2005;40(2):182–186. doi: 10.1111/j.1600-0765.2005.00789.x.
3.
Pourzarandian A, Watanabe H, Ruwanpura SM, Aoki A, Ishikawa I. Effect of low-level Er:YAG laser irradiation on cultured human gingival fibroblasts. J Periodontol. 2005;76(2):187–193. doi: 10.1902/jop.2005.76.2.187.
4.
Hympanova L, Mackova K, El-Domyati M, Vodegel E, Roovers JP, Bosteels J, et al. Effects of non-ablative Er:YAG laser on the skin and the vaginal wall: systematic review of the clinical and experimental literature. Int Urogynecol J. 2020;31(12):2473–2484. doi: 10.1007/s00192-020-04452-9.
5.
Ogita M, Tsuchida S, Aoki A, Satoh M, Kado S, Sawabe M, et al. Increased cell proliferation and differential protein expression induced by low-level Er:YAG laser irradiation in human gingival fibroblasts: proteomic analysis. Lasers Med Sci. 2015;30(7):1855–1866. doi: 10.1007/s10103-014-1691-4.
6.
Zaitsev AE, Asanov ON. Erbium:yttrium aluminium garnet (Er:YAG) laser therapy versus sharp debridement in the management of chronic ulcers of the lower extremity: A randomized controlled trial. Int Wound J. 2025;22(6):e70688. doi: 10.1111/iwj.70688.
7.
Maghfour J, Ozog DM, Mineroff J, Jagdeo J, Kohli I, Lim HW. Photobiomodulation CME part I: Overview and mechanism of action. J Am Acad Dermatol. 2024;91(5):793–802. doi: 10.1016/j.jaad.2023.10.073.
8.
de Freitas LF, Hamblin MR. Proposed mechanisms of photobiomodulation or low-level light therapy. IEEE J Sel Top Quantum Electron. 2016;22(3):7000417. doi: 10.1109/JSTQE.2016.2561201.
9.
Guo Z, Yuan K. The application of light emitting diode (LED) in cosmetic dermatology. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 2025;41(5):e70041. doi: 10.1111/phpp.70041.
10.
Dompe C, Moncrieff L, Matys J, Grzech-Leśniak K, Kocherova I, Bryja A, et al. Photobiomodulation-Underlying Mechanism and Clinical Applications. J Clin Med. 2020;9(6):1724. doi: 10.3390/jcm9061724.
11.
Glass GE. Photobiomodulation: the clinical applications of low-level light therapy. Aesthet Surg J. 2021;41(6):723–738. doi: 10.1093/asj/sjab025.
12.
Wang X, Tian F, Soni SS, Gonzalez-Lima F, Liu H. Interplay between up-regulation of cytochrome-c-oxidase and hemoglobin oxygenation induced by near-infrared laser. Sci Rep. 2016;6:30540. doi: 10.1038/srep30540.
13.
Modena DAO, Miranda ACG, Grecco C, Liebano RE, Cordeiro RCT, Guidi RM. Efficacy, safety, and guidelines of application of the fractional ablative laser erbium:YAG 2940 nm and non-ablative laser erbium glass in rejuvenation, skin spots, and acne in different skin phototypes: a systematic review. Lasers Med Sci. 2020;35(9):1877–1888. doi: 10.1007/s10103-020-03046-7.
14.
Pan TL, Wang PW, Lee WR, Fang CL, Chen CC, Huang CM, et al. Systematic evaluations of skin damage irradiated by an erbium:YAG laser: histopathologic analysis, proteomic profiles, and cellular response. J Dermatol Sci. 2010;58(1):8–18. doi: 10.1016/j.jdermsci.2010.02.001.
15.
Weniger FG, Weidman AA, Barrero Castedo CE. Full-field erbium:YAG laser resurfacing: complications and suggested safety parameters. Aesthet Surg J. 2020;40(10):NP374–NP385. doi: 10.1093/asj/sjz319.
16.
Tanzi EL, Alster TS. Side effects and complications of variable-pulsed erbium:yttrium–aluminum–garnet laser skin resurfacing: extended experience with 50 patients. Plast Reconstr Surg. 2003;111(4):1524–1529. doi: 10.1097/01.PRS.0000049647.65948.50.
17.
Alsaad SM, Ross EV, Smith WJ, DeRienzo DP. Analysis of depth of ablation, thermal damage, wound healing, and wound contraction with erbium:YAG laser in a Yorkshire pig model. J Drugs Dermatol. 2015;14(11):1245–1252.
18.
Fiegler-Rudol J, Kępa M, Skaba D, Wiench R. Er:YAG laser energy optimization for reducing single-species microbial growth on agar surfaces in vitro. Pathogens. 2025;14(12):1287. doi: 10.3390/pathogens14121287.
19.
Trakarnphornsombat W, Kimura H. Live-cell tracking of γ-H2AX kinetics reveals the distinct modes of ATM and DNA-PK in the immediate response to DNA damage. J Cell Sci. 2023;136(8):jcs260698. doi: 10.1242/jcs.260698.
20.
Prabhu KS, Kuttikrishnan S, Ahmad N, Habeeba U, Mariyam Z, Suleman M, et al. H2AX: A key player in DNA damage response and a promising target for cancer therapy. Biomed Pharmacother. 2024;175:116663. doi: 10.1016/j.biopha.2024.116663.
21.
Mah LJ, El-Osta A, Karagiannis TC. gammaH2AX: a sensitive molecular marker of DNA damage and repair. Leukemia. 2010; 24(4):679–686. doi: 10.1038/leu.2010.6.
22.
Rahmanian N, Shokrzadeh M, Eskandani M. Recent advances in γH2AX biomarker-based genotoxicity assays: A marker of DNA damage and repair. DNA Repair. 2021;108:103243. doi: 10.1016/j.dnarep.2021.103243.
23.
Kinner A, Wu W, Staudt C, Iliakis G. Gamma-H2AX in recognition and signaling of DNA double-strand breaks in the context of chromatin. Nucleic Acids Res. 2008;36(17):5678–5694. doi: 10.1093/nar/gkn550.
24.
Surova O, Zhivotovsky B. Various modes of cell death induced by DNA damage. Oncogene. 2013;32(33):3789–3797. doi: 10.1038/onc.2012.556.
25.
Matt S, Hofmann TG. The DNA damage-induced cell death response: a roadmap to kill cancer cells. Cell Mol Life Sci. 2016;73(15):2829–2850. doi: 10.1007/s00018-016-2130-4.
26.
Borges HL, Linden R, Wang JY. DNA damage-induced cell death: lessons from the central nervous system. Cell Res. 2008;18(1):17–26. doi: 10.1038/cr.2007.110.
27.
Tu HC, Ren D, Wang GX, Chen DY, Westergard TD, Kim H, et al. The p53-cathepsin axis cooperates with ROS to activate programmed necrotic death upon DNA damage. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009;106(4):1093–1098. doi: 10.1073/pnas.0808173106.
28.
Lynnyk A, Lunova M, Jirsa M, Egorova D, Kulikov A, Kubinová Š, et al. Manipulating the mitochondria activity in human hepatic cell line Huh7 by low-power laser irradiation. Biomed Opt Express. 2018;9(3):1283–1300. doi: 10.1364/BOE.9.001283.
29.
Wu S, Xing D, Wang F, Chen T, Chen WR. Mechanistic study of apoptosis induced by high-fluence low-power laser irradiation using fluorescence imaging techniques. J Biomed Opt. 2007;12(6):064015. doi: 10.1117/1.2804923.
30.
Wu S, Xing D, Gao X, Chen WR. High fluence low-power laser irradiation induces mitochondrial permeability transition mediated by reactive oxygen species. J Cell Physiol. 2009;218(3):603–611. doi: 10.1002/jcp.21636.
31.
Lukac M, Zorman A, Lukac N, Perhavec T, Tasic B. Characteristics of non-ablative resurfacing of soft tissues by repetitive Er:YAG laser pulse irradiation. Lasers Surg Med. 2021;53(9):1266–1278. doi: 10.1002/lsm.23402.
32.
Ross EV, McKinlay JR, Sajben FP, Miller CH, Barnette DJ, Meehan KJ, et al. Use of a novel erbium laser in a Yucatan minipig: a study of residual thermal damage, ablation, and wound healing as a function of pulse duration. Lasers Surg Med. 2002;30(2):93–100. doi: 10.1002/lsm.10030.
33.
Chung H, Dai T, Sharma SK, Huang YY, Carroll JD, Hamblin MR. The nuts and bolts of low-level laser (light) therapy. Ann Biomed Eng. 2012;40(2):516–533. doi: 10.1007/s10439-011-0454-7.