Udział szczepów chorobotwórczych Gram (-) wraz z profilami lekooporności występujących w zakażeniach bakteryjnych u pacjentów hospitalizowanych w Klinice Chorób Płuc i Gruźlicy w Zabrzu Śląskiego Uniwersytetu Medycznego w Katowicach
 
Więcej
Ukryj
1
Katedra i Zakład Mikrobiologii i Immunologii, Wydział Lekarski z Oddziałem Lekarsko-Dentystycznym w Zabrzu, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach
2
Katedra i Klinika Chorób Płuc i Gruźlicy, Wydział Lekarski z Oddziałem Lekarsko-Dentystycznym w Zabrzu, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach
AUTOR DO KORESPONDENCJI
Bogdan Mazur   

Katedra i Zakład Mikrobiologii i Immunologii, Wydział Lekarski z Oddziałem Lekarsko-Dentystycznym w Zabrzu, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, ul. Jordana 19, 41-808 Zabrze
 
Ann. Acad. Med. Siles. 2019;73:81–88
 
SŁOWA KLUCZOWE
DZIEDZINY
STRESZCZENIE
Wstęp:
Zakażenia układu oddechowego wciąż stanowią zagrożenie dla zdrowia i życia ludzi. Nawracające zapalenia dróg oddechowych są niezwykle istotnym problemem ze względu na złożone przyczyny ich powstawania. W nawracających zakażeniach wiele chorób przewlekłych jest rozpoznawanych zbyt późno z powodu dużej różnorodności i zmienności objawów klinicznych. Zakażenia bakteryjne stanowią jedną z przyczyn zaostrzeń wielu obturacyjnych chorób układu oddechowego. W zakażeniach szpitalnych układu oddechowego dominują pałeczki Gram (-) Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Enterobacter spp., Pseudomonas aeruginosa i Acinetobacter spp. Drobnoustroje izolowane z zakażeń coraz częściej charakteryzują się opornością na większość, a czasami nawet na wszystkie dostępne leki. Celem pracy była ocena częstości występowania różnych gatunków pałeczek Gram (-) oraz ich profili lekooporności.

Materiał i metody:
Badane gatunki pałeczek Gram (-) wyhodowano od pacjentów hospitalizowanych w Klinice Chorób Płuc i Gruźlicy Samodzielnego Publicznego Szpitala Klinicznego Nr 3 w Zabrzu w latach 2008–2012. Ocenie poddano wyniki badań bakteriologicznych plwociny i popłuczyn oskrzelowych przeprowadzonych w Laboratorium Mikrobiologicznym Katedry i Zakładu Mikrobiologii i Immunologii w Zabrzu Śląskiego Uniwersytetu Medycznego w Katowicach. W ciągu 5 lat wykonano 3810 badań popłuczyn oskrzelowych oraz plwocin.

Wyniki:
Wyhodowano 1263 szczepy bakterii chorobotwórczych, w tym 818 szczepów pałeczek Gram (-), które stanowiły 64,8% ogólnej liczby bakterii patogennych. Drobnoustroje Gram (-) w latach 2008–2012 wykazały najwyższy odsetek oporności w stosunku do tetracyklin, następnie do penicylin i penicylin z inhibitorami, sulfonamidów i trimetoprymu, a w dalszej kolejności do cefalosporyn, chinolonów oraz aminoglikozydów.

 
REFERENCJE (30)
1.
Murray P.R., Rosenthal K.S., Pfaller M.A. Mikrobiologia. Elservier Urban & Partner. Wrocław 2011: 9–175.
 
2.
Płusa T. Zakażenia układu oddechowego – klinika a bakteriologia. Nowa Med. 2009; 2: 109–112.
 
3.
Brown J. Pneumonia in the Non-HIV immunocompromised host. In: Clinical respiratory medicine. Eds. R.K. Albert, S.G. Spiro, J.R. Jett. 3rd ed. Mosby Elsevier. Philadelphia 2008: 365–378.
 
4.
Grochowalska A., Kozioł-Montewka M., Sobieszczańska A. Analysis of Acinetobacter baumannii resistance patterns in patients with chronic obstructive pulmonary disease (COPD) in terms of choice of effective empiric antibiotic therapy. Ann. Agric. Environ. Med. 2017; 24(2): 307–311, doi: 10.26444/aaem/74710.
 
5.
Balczon R., Morrow K.A., Zhou C., Edmonds B., Alexeyev M., Pittet J.F., Wagener B.M., Moser S.A., Leavesley S., Zha X., Frank D.W., Stevens T. Pseudomonas aeruginosa infection liberates transmissible, cytotoxic prion amyloids. FASEB J. 2017; 31(7): 2785–2796, doi: 10.1096/fj.201601042RR.
 
6.
Płusa T. Charakterystyka patogenów odpowiedzialnych za zakażenia układu oddechowego. Lekarz 2012; 1: 36–42.
 
7.
Tyczkowska-Sieron R., Bartoszko-Tyczkowska A., Gaszynski W. Bacterial infections in Intensive Care Unit patients analyzed on the example of the Lodz Medical University Hospital No 1 in the period 2002–2015. Med. Dosw. Mikrobiol. 2016; 68(1): 39–46.
 
8.
Grubek-Jaworska H. Współczesne możliwości diagnostyczne zakażeń układu oddechowego. Int. Rev. Allergol. Clin. Immunol. Family Med. 2012; 18: 127–134.
 
9.
Gładysz A., Fleischer-Stępniewska K. Renesans chorób zakaźnych. Pol. Merk. Lek. 2011; 30(179): 313–315.
 
10.
Alamoudi O.S. Bacterial infection and risk factors in outpatients with acute exacerbation of chronic obstructive pulmonary disease: a 2-year prospective study. Respirology 2007; 12(2): 283–287.
 
11.
Erkan L., Uzun O., Findik S., Katar D., Sanic A., Atici A.G. Role of bacteria in acute exacerbations of chronic obstructive pulmonary disease. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis. 2008; 3(3): 463–467.
 
12.
Sethi S., Timothy F., Murphy T.F. Infection in the pathogenesis and course of chronic obstructive pulmonary disease. N. Engl. J. Med. 2008; 359(22): 2355–2365, doi: 10.1056/NEJMra0800353.
 
13.
Byun M.K., Chang J., Kim H.J., Jeong S.H. Differences of lung microbiome in patients with clinically stable and exacerbated bronchiectasis. PLoS One 2017; 12(8): e0183553, doi: 10.1371/journal.pone.0183553.
 
14.
Lanoix J.P., Pluquet E., Lescure F.X., Bentayeb H., Lecuyer E., Boutemy M., Dumont P., Jounieaux V., Schmit J.L., Dayen C., Douadi Y. Bacterial infection profiles in lung cancer patients with febrile neutropenia. BMC Infect. Dis. 2011; 11: 183, doi: 10.1186/1471-2334-11-183.
 
15.
Yamada Y., Sekine Y., Suzuki H., Iwata T., Chiyo M., Nakajima T., Yasufuku K., Yoshida S. Trends of bacterial colonisation and the risk of postoperative pneumonia in lung cancer patients with chronic obstructive pulmonary disease. Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2010; 37(4): 752–757, doi: 10.1016/j.ejcts.2009.05.039.
 
16.
Laroumagne S., Salinas-Pineda A., Hermant C., Murris M., Gourraud P.A., Do C., Segonds C., Didier A., Mazières J. Incidence and characteristics of bronchial colonisation in patient with lung cancer: a retrospective study of 388 cases. Rev. Mal. Respir. 2011; 28(3): 328–335, doi: 10.1016/j.rmr.2010.05.020.
 
17.
Fatima A., Naqvi S.B., Khaliq S.A., Perveen S., Jabeen S. Antimicrobial susceptibility pattern of clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa isolated from patients of lower respiratory tract infections. Springerplus 2012; 1(1): 70, doi: 10.1186/2193-1801-1-70.
 
18.
Qadeer A., Akhtar A., Ain Q.U., Saadat S., Mansoor S., Assad S., Ishtiaq W., Ilyas A., Khan A.Y., Ajam Y. Antibiogram of Medical Intensive Care Unit at Tertiary Care Hospital Setting of Pakistan. Cureus 2016; 8(9): e809.
 
19.
Laroumagne S., Lepage B., Hermant C., Plat G., Phelippeau M., Bigay-Game L., Lozano S., Guibert N., Segonds C., Mallard V., Augustin N., Didier A., Mazieres J. Bronchial colonisation in patients with lung cancer: a prospective study. Eur. Respir. J. 2013; 42(1): 220–229, doi: 10.1183/09031936.00062212.
 
20.
Paluchowska P., Skałkowska M., Spelak A., Budak A. Występowanie patogenów alarmowych w środowisku szpitalnym. Część I. Pałeczki z rodziny Enterobacteriaceae wytwarzające ß-laktamazy ESBL. Med. Dośw. Mikrobiol. 2012; 64: 35–43.
 
21.
Paluchowska P., Skałkowska M., Spelak A., Budak A. Występowanie patogenów alarmowych w środowisku szpitalnym. Część II. Wielolekooporne pałeczki niefermentujące. Med. Dośw. Mikrobiol. 2012; 64: 45–53.
 
22.
Behroozi A., Rahbar M., Yousefi J.V. Frequency of extended spectrum beta-lactamase (ESBLs) producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae isolated from urine in an Iranian 1000-bed tertiary care hospital. Afr. J. Microbiol. Res. 2010; 4(9): 881–884.
 
23.
Yayan J., Ghebremedhin B., Rasche K. Cefepime shows good efficacy and no antibiotic resistance in pneumonia caused by Serratia marcescens and Proteus mirabilis – an observational study. BMC Pharmacol. Toxicol. 2016; 17: 10, doi: 10.1186/s40360-016-0056-y.
 
24.
Prakash S.K., Arora V., Prashad R., Sharma V.K. In vitro activity of ceftriaxone plus tazobactam against members of Enterobacteriaceae. J. Assoc. Physicians India 2005; 53: 595–598.
 
25.
Rajpurohit H., Vinay Kumar B.M., Sharadamma K.C., Radhakrishna P.M. In-vitro activity of ceftriaxone in combination with sulbactam and tazobactam against Escherichia coli. Int. J. Pharm. Bio. Sci. 2011; 1(4): 545–550.
 
26.
Ahmed S.M., Jakribettu R.P., Meletath S.K., Arya B., Shakir V.P.A. Lower respiratory tract infections (LTRIs): An insight into the prevalence and the antibiogram of the gram negative, respiratory, bacterial agents. J. Clin. Diagn. Res. 2013; 7(2): 253–256, doi: 10.7860/JCDR/2013/5308.2740.
 
27.
Olugbue V., Onuoha S. Prevalence and antibiotic sensitivity of bacterial agents involved in lower respiratory tract infections. Int. J. Biol. Chem. Sci. 2011; 5(2): 774–781.
 
28.
Kaul S., Brahmadathan K.N., Jagannati M., Sudarsanam T.D., Pitchamuthu K., Abraham O.C., John G. One year trends in the gram-negative bacterial antibiotic susceptibility patterns in a medical intensive care unit in South India. Indian J. Med. Microbiol. 2007; 25(3): 230–235.
 
29.
Akingbade O.A., Ogiogwa J.I., Okerentugba P.O, Innocent-Adiele H.C., Onoh C.C., Nwanze J.C., Okonko I.O. Prevalence and antibiotic susceptibility pattern of bacterial agents involved in lower respiratory tract infections in Abeokuta, Ogun State, Nigeria. Rep. Opin. 2012; 4(5): 25–30.
 
30.
Goel N., Chaudhary U., Aggarwal R., Bala K. Antibiotic sensitivity pattern of gram negative bacilli isolated from the lower respiratory tract of ventilated patients in the intensive care unit. Indian J. Crit. Care Med. 2009; 13(3): 148–151, doi: 10.4103/0972-5229.58540.
 
eISSN:1734-025X